Comment cultiver Haworthia stripedii ? Méthodes et techniques de sélection de Haworthia stripedii

Il est désormais courant de cultiver des plantes succulentes. La méthode de plantation des plantes succulentes est simple et la gestion et l'entretien ultérieurs ne sont pas fastidieux, c'est pourquoi de nombreuses personnes aiment cultiver des plantes succulentes. Ce que je vais vous présenter aujourd’hui, c’est l’Haworthia. Alors, en tant que débutant, à quelles étapes devez-vous faire attention lors de la plantation de l’Haworthia ? Ensuite, nous vous présenterons comment cultiver Haworthia striata.

Comment faire pousser Haworthia striata

Comment reproduire Haworthia striata

Les méthodes de propagation couramment utilisées sont la division et le bouturage. La division peut être effectuée tout au long de l'année. En général, lors du rempotage en avril ou en mai, les jeunes plants autour de la plante mère sont épluchés et plantés directement dans les pots. Il est préférable de procéder aux boutures entre mai et juin. Coupez les feuilles charnues avec une petite quantité de partie semi-lignifiée et insérez-les dans un substrat de sable de rivière propre. Il faudra environ 20 à 25 jours pour qu'elles prennent racine. Il est préférable de les transplanter dans le sol de culture lorsque les racines mesurent 2 à 3 cm de long. La méthode de division peut être réalisée toute l'année en intérieur, mais elle est plus adaptée d'avril à mai de chaque année. Coupez les jeunes plants directement à côté de la plante mère, séchez-les légèrement, puis plantez-les dans un autre pot.

Propagation par division

Période de division : Il est préférable de le faire au début du printemps (février ou mars) après le dégel du sol.
Méthode de division : sortez la plante mère du pot, secouez l'excédent de terre, séparez les racines emmêlées autant que possible et utilisez un couteau bien aiguisé pour la diviser en deux ou plusieurs plantes. Chaque plante doit avoir un système racinaire considérable et ses feuilles doivent être correctement taillées pour faciliter la survie.

Désinfection des pots

Faites tremper les petites plantes divisées dans du Benomyl dilué 1500 fois pendant cinq minutes, sortez-les et laissez-les sécher, puis elles peuvent être mises en pot. Vous pouvez également utiliser du Benomyl pour irriguer les racines immédiatement après la mise en pot.

Gestion après la division

Après la division et la mise en pot, irriguez les racines ou arrosez abondamment une fois. En raison de la forte dégradation de son système racinaire et de sa faible capacité d'absorption d'eau, il lui faut environ 3 à 4 semaines pour se rétablir et faire pousser de nouvelles racines. Il faut donc limiter l'arrosage dans les 3 à 4 semaines suivant la division pour éviter la pourriture des racines. Cependant, la transpiration des feuilles n'est pas affectée. Afin de maintenir l'équilibre hydrique des feuilles, il faut pulvériser les feuilles 1 à 3 fois par jour (pulvériser davantage lorsque la température est élevée, pulvériser moins ou pas du tout lorsque la température est basse). Ne pas fertiliser pendant cette période. Après la division, il faut également faire attention à la forte lumière du soleil. Il est préférable de le placer dans un abri ombragé pour l'entretien.

Propagation rapide de la culture tissulaire

1. Matériaux : Jeunes pousses aux racines des tiges d'Haworthia striata (les cellules végétales sont omnipotentes, c'est-à-dire que toute cellule végétale a la capacité de former le corps de la plante. En d'autres termes, toute cellule hautement différenciée a la capacité de revenir à la cellule indifférenciée d'origine et peut se différencier en d'autres formes de cellules hautement différenciées. Cette « omnipotence » est la base théorique de la culture des tissus végétaux. Sur la base de cette caractéristique des cellules végétales, toute cellule hautement différenciée du corps de la plante peut être cultivée arbitrairement, et les jeunes pousses sont les parties hautement différenciées, elles sont donc choisies). Haworthia rayé

2. Conditions de culture : MS est utilisé comme milieu de culture de base. (Ingrédients : KNO3 : 1650 NH4NO3 : 1900 MgSO4.7H2O : 370 KH2PO4 : 170 CaCl2.2H2O : 440 MnSO4.4H2O : 22,3 ZnSO4.7H2O : 8,6 H3BO3 : 6,2 NaMoO4.2H2O : 0,25 CuSO4.5H2O : 0,025 Na2.EDTA : 37,3 FeSO4.7H2O : 27,8 Inositol : 100 Niacine : 0,5 Glycine : 2 Chlorhydrate de thiamine : 0,1 Chlorhydrate de pyridoxine : 0,5 KI : 0,83 CoCl2.6H2O : 0,025 Saccharose)

Coupez les bourgeons axillaires avec 4 à 5 jeunes feuilles de la racine de la tige de la plante mère d'Haworthia en pot. Rincer à l'eau courante pendant 5 minutes, tremper dans de la Chlorhexidine à 0,2 % pendant 30 minutes et rincer à l'eau courante pendant 10 minutes (cette méthode permet d'économiser l'eau et présente un taux de pollution très faible). Placez le matériel sur un banc propre et désinfectez-le avec 0,1 % de HgCl2 pendant 8 minutes, rincez-le 10 fois avec de l'eau stérile et absorbez l'humidité avec du papier filtre stérile. Les bourgeons ont été coupés au scalpel et les jeunes feuilles coupées ont été divisées en petits morceaux de 0,5 cm. Inoculer dans le milieu de culture et cultiver.

3. Culture des bourgeons : Les bourgeons d'Haworthia striata gonflent et poussent rapidement sur le milieu de culture. Après environ 20 jours, les bourgeons allongés sont coupés en 3-4 parties et inoculés dans un autre milieu de culture. Après une autre semaine, un groupe de jeunes pousses (environ 5 à 10) germera à la base de chaque bourgeon.

4. Induction de cals et de bourgeons : après que les jeunes segments de feuilles ont été cultivés dans le milieu de culture pendant environ 2 semaines, une couche de tissu cal incolore et transparent apparaîtra sur la surface de la plaie. Après 20 jours de culture, le cal n'a pas proliféré mais 2-3 petits bourgeons en sont sortis. Les bourgeons ont été coupés et transférés dans un autre milieu de culture pour former un groupe de petites plantules.

5. Induction et transformation des racines : Placer les jeunes segments de feuilles en D et cultiver pendant un mois. De nombreuses racines sphériques blanches se formeront au niveau de la blessure et continueront à se multiplier. Ces racines ont été transférées dans un milieu de culture et cultivées pendant environ une semaine. Les racines sont devenues vertes et des tissus calleux ont émergé. Deux semaines après avoir été transférées dans un autre milieu de culture, des embryons sphériques ont été produits et certains embryons ont commencé à développer de jeunes feuilles.

6. Subculture et propagation rapide : Le système de propagation in vitro de la plante obtenue permet d'obtenir une prolifération géométrique grâce à des séparations et des micro-coupures répétées. Ce processus est appelé micropropagation rapide ou propagation rapide. La multiplication rapide des plantes est généralement réalisée après l'établissement de la lignée de multiplication in vitro. Parfois, le tissu cal peut également proliférer rapidement, auquel cas on utilise généralement une culture en suspension liquide. Les amas de plantules ou embryons sphériques obtenus ci-dessus peuvent être grossièrement divisés et inoculés dans un autre milieu de culture pour proliférer en grande quantité, doublant en nombre toutes les deux semaines en moyenne. En utilisant un bourgeon comme exosome, plus de 20 bouteilles de plantes de sous-culture (environ 30 plantes dans chaque bouteille) ont été obtenues deux mois plus tard.

7. Renforcer les plantules et les faire prendre racine : Inoculer les gros plants dans le milieu de culture E, augmenter l'intensité lumineuse à 10h/j, et ils prendront racine au bout d'une semaine. Après une semaine de culture supplémentaire, ils peuvent être transplantés. (Lorsque la technologie de culture tissulaire est appliquée pour construire la forme globale d'une certaine plante, c'est-à-dire pour obtenir un plant avec des tiges, des racines et des feuilles, il doit subir un certain traitement de durcissement du plant, de sorte qu'il passe progressivement d'un environnement stérile à un environnement bactérien, et d'un environnement de culture artificielle à un environnement naturel. Il est d'usage d'adopter la « méthode de traitement de transition », c'est-à-dire de changer progressivement l'environnement, comme l'utilisation d'un sol stérilisé, l'hydratation et la conservation de la chaleur pour les semis en bouteille, et en même temps, certains traitements de renforcement des semis doivent être effectués, comme l'augmentation de la lumière et la supplémentation en solution nutritive. Après une série de traitements, un « plant cloné » cultivé à partir d'une culture tissulaire survivra avec succès.)

8. Transplantation : Ouvrir le flacon avant d'en extraire les graines et les laisser durcir pendant deux jours. Lavez le milieu de culture des semis enracinés et déplacez-les dans une matrice stérile de vermiculite + perlite, maintenez l'humidité et le taux de survie est supérieur à 90 %.